PCR引物设计的目的是确保PCR反应能够有效、特异性地扩增目标DNA序列。所以引物的好坏,直接关乎实验的成功。
1、引物长度:18-30nt,通常以20nt左右最为常用。上下游引物的长度最好基本相等,最多相差不超过3bp。引物过短,易导致非特异扩增;较长的引物虽特异性好,但在引物内易形成二级结构,如发夹环。
2、引物GC含量:40-60%,G+C比例太低扩增效果不佳,G+C比例过高易出现非特异条带。ATGC最好随机分布,避免出现重复的基序。
3、引物的熔解温度:55-75℃,退火温度需要比解链温度低5℃。引物对之间的Tm的差异应不超过2-3℃。
引物的熔解温度(Tm)是指在特定条件下,DNA或RNA引物双链解链成为单链的中点温度。Tm值对于PCR反应的退火步骤至关重要,因为它影响引物与目标DNA的结合效率。计算引物的Tm值可以使用以下基本公式
对于短于20个碱基的引物,可以使用以下简化公式估算Tm:
其中,A表示腺嘌呤(A)的数量,T表示胸腺嘧啶(T)的数量,C表示胞嘧啶(C)的数量,G表示鸟嘌呤(G)的数量。
4、引物扩增跨度:普通PCR以200-500bp为宜,实时荧光PCR则为70-150bp。
5、引物的二级结构:引物设计最好跨内含子设计,避免出现发夹结构。某些引物无效的主要原因是引物重复区DNA二级结构的影响。
6、确保碱基的随机分布
引物设计中四种碱基的分步保持随机性,有助于提高引物的合成效率和PCR扩增的特异性,应避免设计包含5个或更多连续相同碱基的引物,如AAAAAAAA或CCCCCCCC。同聚物串可能导致非特异性扩增,并且可能在PCR过程中形成发夹结构或二聚体。
7、确保引物自身/之间没有连续4个碱基的互补
避免引物自身或引物之间出现连续4个碱基的互补非常重要,因为这可能导致非特异性扩增或影响PCR的效率。单个引物不应在其序列内部形成互补,这会促使发夹结构的形成,从而降低可用于扩增的引物浓度。一对引物(正向和反向)之间也不应存在连续4个碱基以上的互补,以防止它们形成稳定的二聚体。3'端稳定性:特别要注意引物的3'端,因为DNA聚合酶在3'端容易出错,如果3'端存在互补序列,可能导致非特异性扩增。
8、引物5'端可修饰,3'不可修饰
5'端修饰的常见目的:
标记与检测:在5'端添加荧光标记或其他标签,便于扩增子的检测和分析。
引入限制性酶切位点:为了将扩增的片段克隆到特定的载体中,可以在5'端添加限制性酶切位点序列。
引入突变:在5'端设计引物时,可以引入特定的点突变,用于构建突变体或进行定点突变实验。
增加引物的Tm:通过在5'端添加G或C碱基,可以提高引物的Tm值,有助于提高PCR的特异性。
提高引物的溶解度:有时在5'端添加一些非特异性的序列,可以提高引物在水中的溶解度。
3'端修饰的注意事项:
稳定性:3'端的稳定性对PCR扩增至关重要,因为DNA聚合酶在3'端添加核苷酸。如果在3'端引入修饰,可能会影响DNA聚合酶的延伸效率。
非特异性扩增:3'端修饰可能增加非特异性扩增的风险,因为修饰可能改变引物与模板DNA的配对方式。
错配容忍度:DNA聚合酶对3'端的错配容忍度较低,修饰可能会影响引物的特异性。
延伸效率:3'端的修饰可能影响DNA聚合酶的延伸效率,导致PCR产物的产量降低。
MDL科研助手
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