下面的简单方案是Clhen等(1972)所用方法的变通方案,常用于成批制备感受态细菌,这些细菌可使每微克螺旋质粒DNA产生 5x106-2x107个转化菌落,这样的转化效率足以满足所有在质粒中进行的常规克隆的需要。该方法完全适用于大多数大肠杆菌菌株,并且比方案I快速, 重复性更好。该法制备的感受态细胞可贮存于-70℃,但保存时间过长会使转化效率在一定程度上受到影响。
1)从于37℃培养16-20小时的新鲜平板中挑取一个单菌落(直径2-3mm),转到一个含有100ml LB或SOB培养基的1L烧瓶中。于37℃剧烈振摇培养约3小时(旋转摇床,300转/分)。为得到有效转化,活细胞数不应超过108细胞ml,可每隔 20-30分种测量OD600值来监测培养物的生长情况。在菌株与菌株之间,OD600值和每毫升中活细胞数间的关系变化很大,因此有必要通过测量特定大 肠杆菌菌株的生长增减物在生长周期的不同时相的OD600值,并将各黧度的增减物铺于无抗生素的LB琼脂平皿以计算每一时相的活细胞数,从而使分光光度读 数得到标化。
2)在无菌条件下将细菌转移到一个无菌、一次性使用的、用冰预冷的50ml聚丙烯管(Falcon 2070)中,在冰上放置10分钟,使培养物冷却至0℃。切记:下述所有步骤均需无菌操作。
3)于4℃用Sorvall GS3转头(或与其相当的转头)以4000转/分离心10分钟,以回收细胞。
4)倒出培养液,将管倒置1分钏以使最后残留的痕量培养液流尽。
5)以10ml用冰预冷的0.1mol/L CaCl2重悬每份沉淀,放置于冰浴上。我们发现将1mol/L CaCl2贮存液[用纯水(Mille-Q级或与其相当的级别)配制]以10ml小份贮存于-20℃煞是方便。制备感受态细胞时,取一小份融化,用纯水稀 释至100mlk,用Nalgene滤器(0.45μm孔径)过滤除菌,然后骤冷到0℃即可。对于大多数大肠肝菌菌株(除MC1061外),在这一步采用 TFB(见表1.3)代替氯化钙可得到相同的或更好的结果。
6)于4℃以4000转/分离心10分钟,以回收细胞。
7)倒出培养液,将管倒置1分钟以使最后残留的痕量培养液流尽。
8)每50ml初始培养物用2ml用冰预冷的0.1mol/L CaCl2[或TFB,见表1.3和步骤5)注]重悬每份细胞沉淀。此时,可将细胞分成小份,放于-70℃冻存[有关讨论请参见53页本节(二)步骤 11)b.c)]。在这些条件下,尽管长期保存后转化效率会稍有下降,但细胞仍可保持处于感受态。Dagert和Ehrlich(1979)曾表明细胞可 以于4℃在CaCl2溶液中保存24-48小时,在贮存的最初12-24小时内,转化效率增加3-5倍,然后降低到初始水平。
9)用冷却的无菌吸头从每种感受态细胞悬液中各取200μl转移到无菌的微量离心管中,每管加DNA(体积∞10μl,DNA∞50ng),轻轻旋转以混匀内容物,在冰中放置30分钟。
10)将管放到预加温到42℃的循环水浴中放好的试管回上,恰恰放置90秒,不要摇动试管。
11)快速将管转移到冰浴中,使细胞冷却1-2分钟。
12)每管加800μlSOC培养基(见附录A)。用水溶将培养基加温至37℃,然后将管转移到37℃摇床上,温育45分钟细菌复苏,并且表达质粒编码的抗生素抗性标记基因。如果要求更高的转化效率,在复苏期中,应温和地摇动细胞(转速不超过225转/分)。
13)将适当体积(每个90mm平板可达200μl)已转化的感受态细胞转移到含20mmol/L MgSO4和相应抗生素的SOB琼脂培养基上。如培养物体积太小(〈10μl)。可再加肉汤培养基,用一无菌的弯头玻棒轻轻地将转化的细胞涂到琼脂平板表 面。如在一个90mm平板上铺200μl以上的感受态细胞,应离心浓缩细胞,然后用适量SOC轻轻重悬细胞。如用四环素抗性作为选择标记,全部的转化混合 物可以铺在一个单独的平皿上(或铺在软琼脂中)。然而如选用氨苄青霉素抗性,则只能将一部分培养物(根据实验决定)铺在单独的平皿上。氨苄青霉素抗性功的 增加与平皿上所加细菌数的增加并无线性比例关系,这可能是因为被抗生素杀死的细胞可释放生长掏物质的缘故。
14)将平板置于室温直至液体被吸收。
15)倒置平皿,于37℃培养,12-16小时后可出现菌落。如检查氨苄青霉素抗性,用转化细胞铺增板时密度较低(每个90mm平板不超过104菌落), 于37℃培养平板时不应超过20小时。氨苄青霉素抗性的转化可将β-内酰胺酶分泌到培养基中,迅速灭活菌落周围区域中的抗生素。这样,铺平板时密度太高或 培养时间太长都会导致出现对氨苄青霉素敏感的卫星菌落。在选择培养基中不用氨苄青霉素而改用羧苄青霉素,以及将抗生素浓度从60μg/ml增至100μg /ml,可使情况有所改善,但不能彻底根除之。
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何发
2020-05-27
2020-05-27
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