免疫荧光包括:直接免疫荧光法和间接法,下面我们一起看看这两种方法的操作步骤和注意事项!
一、直接免疫荧光法的操作步骤
1标本的处理:
石蜡切片经脱蜡、梯度酒精脱水后,进行抗原修复,然后用0.01MPBST漂洗5min × 3/次;2%BSA或10%BSA 37 C湿盒内封闭30min;
2抗体染色:
在标本片上滴加适当稀释的荧光标记抗体(1:8或1:16稀释),放在湿盒中,37°C孵育30min;0.0lmol/L PBS(pH 7.4)漂洗5min × 3/次,不时震荡(洗去多余游离的荧光素标记的抗体);
3缓冲甘油封片
分析纯无荧光的甘油9份+ pH 9.2,0.2M碳酸盐缓冲液1份配制;
4镜检:
在荧光显微镜下观察;
优点:
方法简便、特异性高,非特异性荧光染色少。
缺点:
敏感性偏低;而且每检查一种抗原就需要制备一种荧光抗体。若检测多种抗原需制备多种相应的荧光标记抗体。
直接免疫荧光法的注意事项:
1对荧光标记的抗体的稀释:要保证抗体的蛋白有一定的浓度;
2一般稀释度不应超过1:20,抗体浓度过低,会导致产生的荧光过弱,影响结果的观察;
3染色温度和时间需要根据各种不同的标本及抗原而变化;
–染色时间:从10 min到数小时,一般30 min;
–染色温度:多采用室温(25°C),高于37°C可加强染色效果,但对不耐热的抗原(如流行性乙型脑炎病毒)可采用0-2°C的低温,延长染色时间。–低温染色过夜较37 °C 30 min效果好的多;
4试验时需设置下列对照:
–自发荧光对照(空白对照):标本加0.01mol/L,pH7.4的PBS代替一抗。
–阳性对照:用已知的阳性标本加荧光标记的特异性抗体;
–特异性对照(抑制试验):标本加未标记的特异性抗体,再加荧光标记的特异性抗体;
5若标本自发荧光对照和特异性对照呈无荧光或弱荧光,阳性对照和待检标本呈强荧光,则为特异性阳性染色;
6一般标本在高压汞灯下照射超过3min,就有荧光减弱现象;
7经荧光染色的标本最好在当天观察,随着时间的延长,荧光强度会逐渐下降。
二、间接法又称为荧光抗-抗体法
1需要两种抗体参与
需要两种抗体参与,即一抗和二抗(荧光素标记)。一抗对标本中的抗原来说起抗体的作用,但对荧光标记的二抗来说又起着抗原作用;
–可用来检测标本中未知抗原,也可检测血清中未知抗体。间接免疫荧光法操作步骤
2样本
标本的处理及非特异染色的封闭同直接法;
3一抗染色:
–加未标记的特异性抗体(通常1:100稀释,用0.01MpH7.4的PBS稀释),37°C作用30min或4°C过夜;
4漂洗,避光
0.01M PBST漂洗5min×3次(震荡漂洗);
加荧光标记的二抗抗体,37°C湿盒避光作用30min;
0.01M PBST避光漂洗5min×3次(例如包上锡纸,在摇床上漂洗);
5封片
甘油缓冲液封片;
镜检;
优点:
敏感性较高,比直接法高10倍左右;制备一种荧光标记抗体,可应用于多种一抗。
缺点:
是参加反应的因子较多,产生非特异性染色的机会增多。
间接免疫荧光法的注意事项:
1荧光染色后一般在1h内完成观察,或于4℃保存4h,时间过长 ,会使荧光减弱;
2每次试验时 ,需设置以下三种对照:
–阳性对照:阳性血清+荧光标记物
–阴性对照:阴性血清+荧光标记物
–荧光标记物对照:PBS+荧光标记物
3标本片需在操作的各个步骤中,始终保持湿润,避免干燥;
4一抗和二抗应始终保持在标本片上,避免因放置不平使液体流失,从而造成非特异性荧光染色;
内容来源:网络
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